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（一）原理
等电聚焦技术是一种根据样品的等电点不同而使它们在pH梯度中相互分离的一种电泳技术。
本法的分辩率极高，所以在进行等电聚焦电泳时，要求样品不能过于复杂，一般应经其他方法（如层析法）提纯后再进行等点聚焦，才能得到比较满意的结果。如利用人的纯IgG再经过等电聚焦电泳，可以满意地分离IgG的四个亚类。如IgG2浓缩于pH7.0的部位，IgG3浓缩于pH8.0~9.0的范围内，IgG4则浓缩于pH6.0以下的部位，而IgG则分布于全部pH范围，且只有IgG1能存在于pH9.0以上的部位。
等电聚焦电泳与其他分离方法结合起来，将是一项很有前途的分析鉴定和制备样品的好技术。
（二）器材与试剂配制
1．聚焦柱 有成品出售，分110ml和440ml两种。
2．电源 0V~1 200V可调20W的直流稳压电源。
3．载体两极电解质 市售25ml瓶装，浓度为40％或20％（W/V），pH范围为2.5~11，也有其它pH范围的，可根据实验条件选择购买。
4．蔗糖（分析纯）
1． 电极液的配制见表：
表 正电极缓冲液的配制
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正极在中心管内
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正极在柱顶
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磷酸
或硫酸
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0.05（0.2）ml或1（4）ml
1Mol/L 酸溶液
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0.025（0.1）ml或0.5（2）ml
1Mol/L 酸溶液
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H2O
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15（56）ml
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5（25）ml
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蔗糖
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11（44）g
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表2-3 负极缓冲液的配制
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负极在中心管
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负极在柱顶
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氢氧
化钠
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0.1（0.4）g或1（4）ml
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0.05（0.2）g或0.5（2）ml
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2Mol/L 溶液
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2Mol/L 溶液
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蒸馏水
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14（56）ml
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5（25）ml
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蔗糖
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11（44）g
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此配制用量为最大用量，一般用1/5的量即可。括号内为440ml聚焦柱型号所用量配方。
6．重、轻液的配制与混合
⑴重、轻液的配制：配制方法见表：
表 重、轻液的配制方法
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110ml柱
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440ml柱
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载体40％（ml）
水及蛋白质溶液（ml）
蔗糖（g）
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重液
1.9
37
26
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轻液
0.6
51.5
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重液
7.6
148
104
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轻液
2.4
206
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此表为梯度混合器所用量，如用手工混合法则应相应适当增加20％。
⑵重、轻液的混合：有条件的可采用梯度混合器装柱。手工混合法操作如下：取24支试管（440ml聚焦柱则应取46支试管）按2-5表各加入重、轻液，充分混匀。
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试管号
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重液（ml）
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轻液（ml）
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试管号
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重液（ml）
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轻液（ml）
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1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
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4.6
4.4
4.2
4.0
3.8
3.6
3.4
3.2
3.0
2.8
2.6
2.4
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0.0
0.2
0.4
0.6
0.8
1.0
1.2
1.4
1.6
1.8
2.0
2.2
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13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
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2.2
2.0
1.8
1.6
1.4
1.2
1.0
0.8
0.6
0.4
0.2
0.0
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2.4
2.6
2.8
3.0
3.2
3.4
3.6
3.8
4.0
4.2
4.4
4.6
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（二）操作方法
1．决定电极的极性 如pH梯度范围在6以下时，则聚焦柱底的电极为正极。如pH梯度的范围在6以上时，则柱底为负极。原因是蔗糖浓度越大，电导越小，所以在等电点pH6～7的载体处，应该避免蔗糖浓度最大的部位。
2．装柱 按电极的极性与电极液的要求装柱。将聚焦柱垂直放置，先注入底部电极液，打开中心管下端的活塞，从中心管上端，用带长胶管的注射器注入电极液，使液面在中心管下部开口处之上达1cm处即可。
3．注入载体溶液 加完后应使电极液仍浸没中心管的下部开口，不使电极与载体溶液直接接触。
4．加重、轻混合液 从1号试管加起，用注射器沿管壁缓缓加入，流速约3ml/min，全部重、轻混合液加完后，再在上部加电极液，使上部电极浸没。
5．连接冷凝水管。
6．电泳 电压300V。开始电泳时，由于载体分子都不处于等电状态，所以它们都带电，在电场影响下向各自的等电点移动，因此开始时电流较大，以后逐渐减小。所以在开始时电压可稍低一些。电泳结束时电流约为0.30mA，电泳时间2～3天。
7．样品的收集 断电后，关闭中心管下端活塞以免电极液流出，放入样品，流速2ml/min为宜。以部分收集器收集，每管2ml。
8．测每管的pH值和蛋白含量，将相近pH的同一蛋白质的管合并。
9．将分离的每一样品成分过SepHadexG25（或G50），将蛋白质与载体分离开来。
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