A: RNA模板质量低

B: 对mRNA浓度估计过高

C: 反应体系中存在反转录酶抑制剂或反转录酶量不足

D: 反应体积过大

A: 最常见的原因在于反应体系是PCR的反应体系而不是RT-PCR的反应体系

B: 与反应起始时RNA的总量及纯度有关

C: 建议在试验中加入对照RNA

D: 第一链的反应产物在进行PCR扩增时，在总的反应体系中的含量不要超过1/10

E: 建议用Oligo(dT)或随机引物代替基因特异性引物（GSP）用于第一链合成。由于RNA模板存在二级结构，如环状结果，有可能导致GSP无法与模板退火；或SSⅡ反 转录酶无法从此引物进行有效延伸。目的mRNA中含有强的转录中止位点，可以试用以下方法解决.

a. 将第一链的反应温度提高至50℃。

b. 使用随机六聚体代替Oligo(dT)进行第一链反应。

A: 用RT阴性对照检测是否被基因组DNA污染。如果RT阴性对照的PCR结果也显示同样条带，则需要用DNase I重新处理样品。

B: 在PCR反应中，非特异的起始扩增将导致产生非特异性结果。降低镁离子或是目的DNA的量将减少非特异性结果的产生。

C: 由于mRNA剪切方式的不同，根据选择引物的不同将导致产生不同的RT-PCR结果。

A: 在PCR反应体系中第一链产物的含量过高

B: 减少引物的用量

C: 优化PCR反应条件/减少PCR的循环次数

D: 在用DNase处理被DNA污染的RNA样品时，其产生的寡核苷酸片段会产生非特异性扩增，一般会显示为弥散背景。

大多数情况下是由于退火温度过低而导致的非特异性的起始及延伸产生的对于长片段的PCR，建议将反应体系中cDNA的浓度稀释至1:10（或1:100-1:200）

A: 通常是由于对照RNA中含有痕量DNA而导致的。由于进行体外转录时不可能将所有的DNA模板消除。建议可将第一链cDNA稀释1:10、1:100、1:1000倍以消除DNA污染所造成的影响。

B: 有可能是引物二聚体的条带

A: 有可能是由于模板量过高而导致PCR结果产生了高分子量的DNA胶状物。

B: 建议将第一链结果至少稀释100倍再进行二次扩增。

C: 另外，在二次PCR时使用的退火温度如果比引物的Tm值低5℃，可以将退火温度适当增高或进行热启动以提高特异性。

GSP在扩增低丰度的转录本时是最好的。OligodT引物建议用于高质量RNA及全长转录本的逆转录；随机引物用于mRNA片段的逆转录。

在第一轮PCR中RNA/DNA杂合体不能正常变性时

• 根据不同的目的选择不同的系统：

目的	建议
RT与PCR使用不同的引物 或需要灵活选择PCR DNA聚合酶	两步法RT-PCR系统
高灵敏度	一步法或两步法RT-PCR系统
高特异性	含有适当的DNA聚合酶的两步法RT-PCR系统 或具有高保真Platinum Taq酶的一步法RT-PCR系统
高保真度	含有Pfx Taq酶的两步法RT-PCR系统
长的反转录结果	通常使用两步法RT-PCR系统可达到最佳结果 含Elongase酶的一步法RT-PCR系统