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表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析-实验方法
来源:互联网 作者:未知 发布时间:2006-12-16
表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析-实验方法
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表达蛋白的SDS-聚丙烯酰胺凝胶电泳分析
作者:佚名    实验频道来源:生物谷    点击数:    更新时间:2004-6-18

一、原理
    
细菌体中含有大量蛋白质,具有不同的电荷和分子量。强阴离子去污剂SDS与某一还原剂并用,通过加热使蛋白质解离,大量的SDS结合蛋白质,使其带相同密度的负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶电泳(PAGE)上,不同蛋白质的迁移率仅取决于分子量。采用考马斯亮兰快速染色,可及时观察电泳分离效果。因而根据预计表达蛋白的分子量,可筛选阳性表达的重组体。

、试剂准备

1、30%储备胶溶液:丙烯酰胺(Acr)29.0g,亚甲双丙烯酰胺(Bis)1.0g,混匀后加ddH2O,37OC溶解,定容至100ml, 棕色瓶存于室温。
2、1.5M Tris-HCl(pH 8.0):Tris 18.17g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至8.0,定容至100ml。
3、1M Tris-HCl(pH 6.8):Tris 12.11 g加ddH2O溶解, 浓盐酸调pH至6.8,定容至100ml。
4、10% SDS:电泳级SDS 10.0 g加ddH2O 68℃助溶,浓盐酸调至pH 7.2,定容至100ml。
5、10
´电泳缓冲液(pH 8.3):Tris 3.02 g,甘氨酸 18.8 g,10% SDS 10ml加ddH2O溶解, 定容至100ml。
6、10%过硫酸铵(AP): 1gAP加ddH2O至10ml。
7、
2´SDS电泳上样缓冲液:1M Tris-HCl (pH 6.8)2.5ml,b-巯基乙醇1.0ml,SDS 0.6 g,甘油 2.0ml,0.1%溴酚兰 1.0ml,ddH2O 3.5ml。
8、
考马斯亮兰染色液:考马斯亮兰  0.25 g,甲醇225ml,冰醋酸 46ml,ddH2O 225ml。
9、
脱色液:甲醇、冰醋酸、ddH2O以3∶1∶6配制而成。
二、
操作步骤
采用垂直式电泳槽装置

(一)聚丙烯酰胺凝胶的配制

1、  
分离胶(10%)的配制:
   ddH2O                 4.0ml

   30%储备胶             3.3ml
   1.5M Tris-HCl          2.5ml
   10% SDS               0.1ml
   10% AP                0.1ml
  
取1ml上述混合液,加TEMED(N,N,N
,N-四甲基乙二胺)10μl封底,余加TEMED 4μl ,混匀后灌入玻璃板间,以水封顶,注意使液面平。(凝胶完全聚合需30-60min)
2、  
积层胶(4%)的配制:
 
ddH2O                  1.4 ml
 
30%储备胶             0.33 ml
 
1M Tris-HCl           0.25 ml
 
10%SDS                0.02 ml

 
10%AP                 0.02 ml
 
TEMED                   2 μl

 
将分离胶上的水倒去,加入上述混合液,立即将梳子插入玻璃板间,完全聚合需15-30min。

(二)样品处理:将样品加入等量的2
×SDS上样缓冲液,100℃加热3-5min,离心12000g×1min,取上清作SDS-PAGE分析,同时将SDS低分子量蛋白标准品作平行处理。

(三)上样: 取10μl诱导与未诱导的处理后的样品加入样品池中,并加入20μl低分子量蛋白标准品作对照。

(三) 
电泳:在电泳槽中加入1´电泳缓冲液,连接电源,负极在上,正极在下,电泳时,积层胶电压60V,分离胶电压100V,电泳至溴酚兰行至电泳槽下端停止(约需3hr)。
(四) 
染色:将胶从玻璃板中取出,考马斯亮兰染色液染色,室温4-6hr。
(五) 
脱色:将胶从染色液中取出,放入脱色液中,多次脱色至蛋白带清晰。
(六) 
凝胶摄像和保存:在图像处理系统下将脱色好的凝胶摄像,结果存于软盘中,凝胶可保存于双蒸水中或7%乙酸溶液中。
三、
注意事项

1、
实验组与对照组所加总蛋白含量要相等。
2、
为达到较好的凝胶聚合效果,缓冲液的pH值要准确,10%AP在一周内使用。室温较低时,TEMED的量可加倍。
3、
未聚合的丙烯酰胺和亚甲双丙烯酰胺具有神经毒性,可通过皮肤和呼吸道吸收,应注意防护。

处理 SSI 文件时出错

处理 SSI 文件时出错
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